ПРИЛОЖЕНИЕ
Основные сведения о руководителях кафедр микробиологии медицинских вузов Российской Федерации
Рис. 1. Морфология бактерий:
1 – микрококки; 2 – диплококки; 3 – стрептококки; 4 – стафилококки; 5 – тетракокки; 6 – сарцины; 7 – квадратные бактерии; 8 – тарелкообразные бактерии
Рис. 2. Морфология бактерий:
1 – монобактерии; 2 – диплобактерии; 3 – стрептобактерии; 4 – стрептобациллы; 5 – вибрионы; 6 – спириллы
Рис. 4. Структура пептидогликана.
Стрелками указаны участки молекулы, атакуемые лизоцимом и пенициллином
Рис. 10. Капсулы бактерий.
Klebsiella pneumoniae. Окраска по методу Бурри–Гинса
Рис. 79. Методы обнаружения вирусов:
1 – реакция гемадсорбции; 2 – бляшкообразование
Рис. 89. Тельца Бабеша–Негри при бешенстве
Рис. 90. Вирус оспы:
1 – внутриклеточные включения (тельца Гварниери); 2 – тельца Пашена (вирус оспы, окрашенный специальным методом)
Рис. 92. Стафилококки и стрептококки:
а – мазки из гноя; б – мазки из чистых культур
Рис. 93. Рост стрептококков на кровяном агаре:
а – β-гемолиз; б – α-гемолиз
Рис. 94. Streptococcus pneumoniae:
а – мазок из мокроты больного; б – мазок из чистой бульонной культуры
Рис. 95. Yersinia pestis:
1 – в мазке из бубона; 2 – инволюционные формы; 3 – колонии Y. pestis; 4 – образование Y. pestis цепочек в бульоне
Рис. 96. Brucella melitensis (1) и Francisella tularensis (2) в чистых культурах
Рис. 97. Возбудитель сибирской язвы (Bacillus anthracis):
1 – в крови; 2 – образование капсул, мазок из селезенки
Рис. 99. Рост на среде Эндо:
а – Escherichia. coli; б – Salmonella typhi
Рис. 100. Брюшной тиф:
1 – поражение лимфатического аппарата тонкого кишечника; 2 – S. typhi – мазок из чистой культуры
Рис. 101. Vibrio cholerae:
1 – мазок из испражнений больного; 2 – локализация вибриона на слизистой тонкого кишечника
Рис 102. Возбудитель дифтерии:
1 – инволюционные формы; 2 – окраска по Нейссеру; 3 – окраска метиленовой синей; 4 – почки и надпочечники морской свинки: а – при дифтерийной интоксикации; б – нормальные
Рис. 104. Haemophilus influenzae. Мазок из мокроты больного. Окраска фуксином
Рис. 105. Clostridium tetani. Окраска спор по способу Меллера
Рис. 107. Mycobacterium tuberculosis:
1 – препарат-мазок (окраска по методу Циля – Нильсена); 2 – рост на плотной среде; 3 – рост на жидкой среде
Рис. 108. Mycobacterium leprae. Окраска по методу Циля–Нильсена
Рис. 109. Риккетсии:
1 – кокковидные; 2 – палочковидные; 3 – нитевидные и их дробление; 4 – размножение в цитоплазме эукариотических клеток
Рис. 117. Эритроцитарные формы плазмодиев человека.
P. vivax: 1 – юный шизонт (перстень); 2, 3, 4 – амебовидные шизонты; 5 – делящиеся шизонты; 6 – мерозоиты; 7 – женский гаметоцит; 8 – мужской гаметоцит.
P. malariae: 1 – юный шизонт (перстень); 2 – амебовидный шизонт; 3, 4 – лентовидные шизонты; 5 – делящийся шизонт; 6 – мерозоиты; 7 – женский гаметоцит; 8 – мужской гаметоцит.
P. falciparum: 1, 2 – юные шизонты (перстень); 3, 4 – амебовидные шизонты; 5 – делящийся шизонт; 6 – мерозоиты; 7 – женский гаметоцит; 8 – мужской гаметоцит
Рис. 119. Пространственная структура транскрипционного комплекса (по А. Л. Гнатту [и др.], 2001):
А. Распределение электронной плотности в молекулах нуклеиновых кислот. Слева – участок двухцепочечной ДНК В-формы из 16 пар оснований. Справа – гибрид между ДНК и РНК.
В. Сравнение свободной РНК-полимеразы (вверху) и транскрипционного комплекса (внизу). «Зажим» (показан оранжевым цветом) соединяет нити ДНК (одна нить зеленая, другая – синяя) и РНК (красная), которые связаны в щели над активным центром. Остальная часть белка РНК-полимеразы показана серым.
С. Транскрипционный комплекс. Части рибонуклеопротеидного блока 2 (Rpb2) с одной стороны щели не показаны, чтобы лучше были видны нуклеиновые кислоты. Основания упорядоченных нуклеотидов изображены в виде цилиндров, отходящих перпендикулярно оси цепи. Тонкая зеленая спираль представляет собой вспомогательный рабочий белок, который постоянно разделяет нити ДНК и сдвигает ее для копирования
notes
Назад: УСЛОВНЫЕ СОКРАЩЕНИЯ
Дальше: 1
